Объекты исследования патологической анатомии. Фиксирующие растворы, правила фиксации материала для гистологического исследования. Замораживающий микротом, цели использования.

Патологическая анатомия — СЗГМУ, Лечебное дело

Объекты исследования патологической анатомии. Фиксирующие растворы, правила фиксации материала для гистологического исследования. Замораживающий микротом, цели использования.

Объекты исследования патологической анатомии

Патологическая анатомия изучает структурные (морфологические) основы болезней. Основными объектами исследования являются:

Фиксирующие растворы и правила фиксации материала для гистологического исследования

Фиксация — это консервация тканей с целью максимального сохранения прижизненной структуры клеток и предотвращения аутолиза (самопереваривания) и гниения.

Основные фиксирующие растворы

1. Формалин (10% нейтральный забуференный формалин):

2. Спирты (этиловый, метиловый):

3. Фиксаторы на основе солей тяжелых металлов (жидкость Ценкера, жидкость Буэна):

4. Специализированные фиксаторы (для электронной микроскопии, гистохимии):

Правила фиксации материала

1. Свежесть материала: Фиксацию проводят немедленно после забора (не позднее 15–30 минут), иначе начинается аутолиз.

2. Достаточный объем фиксатора: Соотношение объёма ткани к объёму фиксатора должно быть не менее 1:10 (на один грамм ткани — 10 мл раствора). При недостатке фиксатора центральные участки остаются нефиксированными (зона некробиоза).

3. Размер кусочков: Толщина кусочка не должна превышать 0,5–1,0 см (для формалина), так как скорость пенетрации ограничена. Мелкие биоптаты (игольные) фиксируются целиком, крупные органы (лёгкое, печень, селезёнка) — режут пластинами 0,5–0,8 см.

4. Температура и время: Обычно фиксация проводится при комнатной температуре. Для формалина стандартное время — 12–24 часа (достаточно для 3–5 мм кусочка). При низкой температуре фиксация замедляется, при высокой — ускоряется, но возможна денатурация.

5. Предотвращение деформации: Мягкие ткани (мозг, кишечник) перед фиксацией помещают на фильтровальную бумагу или картонный планшет, чтобы избежать смятия. Полые органы (желудок, матка) фиксируются расправленными на пробковой доске иглами.

6. Маркировка: Каждый кусочек ткани должен быть промаркирован (номер, фрагмент) в соответствии с сопроводительным направлением. Допускается использовать метиленовый синий или тушь для метки на капсуле/серозе.

7. Использование ИГХ и ПЦР: Для иммуногистохимии формалин должен быть строго нейтральным, время фиксации не более 48 ч (иначе блокируются антигены). Для полимеразной цепной реакции (ПЦР) и исследования РНК предпочтителен фиксатор без формальдегида (спирты, РНК-стабилизаторы).

Замораживающий микротом (криостат), цели использования

Замораживающий микротом (криостат) — это прибор для получения гистологических срезов (толщиной 1–20 мкм) из свежезамороженных тканей без их предварительного проведения через спирты и парафин. Срез выполняется лезвием в охлаждённой камере (температура от –20°C до –40°C).

Принцип работы и устройство

Основные цели использования

1. Срочные интраоперационные (экспресс-) биопсии. Самый частый сценарий. Во время операции хирург забирает ткань (например, лимфоузел, край резекции, образование в яичнике). В течение 20 минут патоморфолог готовит срез на криостате, окрашивает гематоксилином и эозином (быстрая окраска) и даёт ответ: есть ли опухолевые клетки, каков характер процесса (доброкачественный/злокачественный), достаточен ли объём удалённой ткани (статус краёв резекции).

2. Выявление жиров и липидов (гистохимия липидов). При фиксации в формалине и проводке через ксилол (растворитель жиров) липиды теряются. На криостатных срезах можно выявить:

3. Ферменто-гистохимия (выявление активности ферментов). Многие ферменты (например, сукцинатдегидрогеназа, кислая фосфатаза) инактивируются при формалиновой фиксации и проводке. Для их обнаружения используют криостатные срезы без фиксации или с минимальной фиксацией.

4. Иммуногистохимия (ИГХ) с антителами к лабильным антигенам. Некоторые антигены разрушаются при длительной формалиновой фиксации и высокой температуре проводки. Криостатная ИГХ позволяет выявить их лучше (хотя рутинно для большинства антигенов парафиновые срезы предпочтительнее из-за лучшего гистологического качества).

5. Микробиологическое исследование (бактериоскопия). В замороженных срезах можно визуализировать микроорганизмы (например, микобактерии туберкулёза при окраске по Цилю-Нильсену) для быстрого скрининга.

Преимущества и недостатки метода

| Преимущества | Недостатки |

| :--- | :--- |

| Быстрота (результат через 10–20 мин) | Худшее гистологическое качество (кристаллы льда искажают структуру, артефакты замерзания — «кристаллы льда») |

| Сохранение липидов, ферментов, лабильных антигенов | Невозможность длительного хранения замороженных блоков |

| Возможность оценки краски без проводки | Фрагментация тканей при замерзании (особенно жировой, богатой водой) |

| Прямое использование для ИГХ (раствор антител быстро проникает) | Криостатные срезы менее долговечны (на стёклах) и хуже демонстрируют детали ядер и соединительной ткани |

Вывод: Замораживающий микротом является незаменимым инструментом в срочной хирургической диагностике и в тех методиках, где ключевую роль играет сохранение молекул, растворимых в органических растворителях (липиды, низкомолекулярные антигены, ферменты).

Все вопросы раздела: подготовка к экзамену по Патологической анатомии